一、细胞基本特性
二、培养条件与试剂
1. 培养基配方
90%MEM(含NEAA)+10%胎牛血清(FBS)+1%青霉素/链霉素双抗+补充物(优化)1% L-谷氨酰胺(增强代谢稳定性)
注:血清批次显著影响状态,选定后囤积半年用量。
2. 培养环境
3. 冻存液配方对比
配方 | 存活率 | 适用场景 |
|---|
90% FBS + 10% DMSO | ≥95% | 长期液氮保存(首选) |
55%培养基+40%FBS+5% DMSO | 85%-90% | 经济型方案 |
细胞密度:5×10⁶~1×10⁷ cells/mL | 程序降温保存 |
|
三、关键操作流程
1. 细胞复苏(冻存管→培养)
快速解冻:37℃水浴中摇晃≤1分钟(残留小冰晶时取出),避免完全融化。
离心去DMSO:
接种与培养:
2. 细胞传代(消化控制为核心)
密度达80%-90%(约2-3天一次)。
消化步骤:
终止与分瓶:
3. 细胞冻存
收集细胞:按传代步骤消化离心,调整密度至≥5×10⁶ cells/mL。
程序降温:
四、关键注意事项
贴壁松散与碎片控制:
污染防控:
消化过度修复:
老化现象识别:
五、常见问题解决
问题 | 原因与解决方案 |
|---|
细胞大量漂浮 | 消化过度 → 缩短时间至≤90秒;运输脱落 → 离心回收后重消化 |
生长缓慢 | 血清活性不足 → 换批次;CO₂浓度偏差 → 校准培养箱 |
培养基快速变黄 | 细胞代谢旺盛 → 增加换液频率至每48小时一次 |
复苏存活率低 | DMSO未彻底去除 → 严格离心步骤;解冻超时 → 控制水浴≤1分钟 |